基于 T 细胞的免疫疗法需要获取大量的 T 细胞。从患者体内分离出的 T 细胞需要在体外进行激活和扩增处理，然后重新注入患者体内以对抗癌细胞。本研究旨在通过引入一种新型细胞培养方法来提高 96 孔板中人类 T 细胞的激活水平。研究结果表明，C.BIRD 细胞培养方法提高了人类 T 细胞的激活水平，但未引起不良激活反应。本研究展示了通过加速工艺开发流程来改进基于 T 细胞的免疫疗法研究的巨大潜力。

在生物学，便携式DNA测序，无标记单分子分析和纳米医学方面，膜纳米孔都体现了其重要的应用价值。传统的物质运输，其依赖于膜上数纳米宽的桶状通道，但是科技发展的需求，需要在形状上可调控的，更加宽的纳米通道，以适应更广泛的应用。而在天然状态下，并不存在这种类的纳米孔。利用蛋白合成该类型的纳米通道，也具有极大的挑战性。本文介绍了利用DNA进行上述结构可调和功能应用多样化的膜纳米孔的设计。该设计将成束的DNA双链制备成构成膜孔的亚单位，并逐步组装成形状上可调节的完整性膜孔，该孔的宽度可达几十纳米。用于识别

使用CRISPR基因组编辑技术能够快速生产患者或健康对照的诱导多能干细胞（iPSC），极大地加速了体外疾病模型系统的产生，用于研究人类疾病机制。然而，在工作流程中仍然存在实质性的限制。在从患者细胞中衍生iPSCs时，可以使用特定的选择标准从未被重编程的细胞中分离出多能细胞。分化过程可以通过使用特定的标记物来丰富目标细胞。最后，分选经过CRISPR编辑的单细胞将提高工作流程的效率。在上述的每一个步骤中，都可以使用柔性流式分选仪进行分选，避免对这些敏感细胞造成伤害。

在生物医学研究领域，药物研发一直是备受瞩目的焦点。传统的药物研发主要依赖动物模型，但这种方式存在诸多问题。动物模型难以精准模拟人体对药物的反应，在毒理学和病理生理学方面的差异尤为明显，导致大量药物在临床试验阶段失败，耗费了大量的时间、资金和人力。据统计，新药临床试验往往需要10-15年，成本高昂，且多数临床候选药物因安全性、药代动力学特性和疗效不佳等问题而夭折[1,2]。 与此同时，传统的二维（2D）细胞培养虽然应用广泛，但它无法真实反映体内复杂的细胞微环境，在预测临床试验结果方面表现欠佳[3]

在肿瘤研究和精准医疗领域，肿瘤类器官（如肿瘤球体）作为一种高度仿生的体外模型，正逐渐成为基础研究、药物开发和个性化医疗的重要工具。然而，传统的肿瘤球体培养方法存在诸多局限性，例如操作复杂、成本高昂、细胞需求量大以及难以实现高通通量筛选等。本篇提出了一种基于滴液微阵列（Droplet Microarray）平台的创新方法，结合I.DOT非接触式移液技术，实现了肿瘤球体的高效培养和药物筛选。

牛抗体的一个显著特点是超长的CDR H3区域，并且有能力进入结构复杂的抗原表位，这在任何其他物种中都没有观察到。因此，牛免疫球蛋白作为针对多种抗原的临床治疗和研究工具具有巨大的发展潜力。然而，与其他物种不同，在单细胞水平研究牛免疫球蛋白基因的技术尚未得到全面开发。Scripps研究所和应用生物医学科学研究所的Smider小组利用NanoCellect的新型细胞分选技术，建立了一种在单细胞水平上扩增牛免疫球蛋白VH和VL基因的新方法。