在生物医学研究领域，药物研发一直是备受瞩目的焦点。传统的药物研发主要依赖动物模型，但这种方式存在诸多问题。动物模型难以精准模拟人体对药物的反应，在毒理学和病理生理学方面的差异尤为明显，导致大量药物在临床试验阶段失败，耗费了大量的时间、资金和人力。据统计，新药临床试验往往需要10-15年，成本高昂，且多数临床候选药物因安全性、药代动力学特性和疗效不佳等问题而夭折[1,2]。 与此同时，传统的二维（2D）细胞培养虽然应用广泛，但它无法真实反映体内复杂的细胞微环境，在预测临床试验结果方面表现欠佳[3]

在肿瘤研究和精准医疗领域，肿瘤类器官（如肿瘤球体）作为一种高度仿生的体外模型，正逐渐成为基础研究、药物开发和个性化医疗的重要工具。然而，传统的肿瘤球体培养方法存在诸多局限性，例如操作复杂、成本高昂、细胞需求量大以及难以实现高通通量筛选等。本篇提出了一种基于滴液微阵列（Droplet Microarray）平台的创新方法，结合I.DOT非接触式移液技术，实现了肿瘤球体的高效培养和药物筛选。

牛抗体的一个显著特点是超长的CDR H3区域，并且有能力进入结构复杂的抗原表位，这在任何其他物种中都没有观察到。因此，牛免疫球蛋白作为针对多种抗原的临床治疗和研究工具具有巨大的发展潜力。然而，与其他物种不同，在单细胞水平研究牛免疫球蛋白基因的技术尚未得到全面开发。Scripps研究所和应用生物医学科学研究所的Smider小组利用NanoCellect的新型细胞分选技术，建立了一种在单细胞水平上扩增牛免疫球蛋白VH和VL基因的新方法。

目前，尚无节省时间且经济高效的高通量筛选方法可用于评估细菌的耐药性。本研究中建立了一个液滴微阵列（DMA）系统，以人类病原体铜绿假单胞菌（P. aeruginosa）为靶标筛选抗菌化合物。研究人员基于 DMA 玻片的润湿性差异，开发了一种用于生成含有细菌的纳升级微滴阵列的快速方法。使用荧光评估微滴中的细菌生长情况。这种新方法能够立即对抗生素库进行筛选。此外，还对来自环境分离物的多耐药菌株 P. aeruginosa 49 的耐药性进行了研究。本研究表明，DMA 平台在快速形成细菌微阵列以进行高通

各种应用都需要生成稳定的单克隆细胞系，包括开发治疗性抗体等生物制剂，或创建用于疾病模型的CRISPR工程细胞等等。虽然对工程细胞系的需求增加，但单克隆细胞系的生产仍然受到当前单细胞分选技术的限制。

全长单细胞 RNA 测序（scRNA-seq）在转录组学领域被视为金标准，它具有高灵敏度且能够捕捉到转录本的复杂性。然而，传统实验方案或工作流程中所使用的文库制备方法处理过程复杂且通量低。