随着能够解析单细胞信息的微流控和基因检测工具的日益普及，对生物学的认识也在不断深入。更重要的是，实现单细胞RNA测序的能力可以对单个细胞进行转录组分析，并以高生物分辨率提供有关流行性、异质性和基因表达的信息。

在生物医学领域，药物研发始终是一场与时间赛跑、与病魔较量的艰苦征程。近年来，新药研发的步伐逐渐放缓，从1991-2000年21个主要国家发现367种新药，到2001-2010年降至251种，进入临床试验的新药数量也越来越少，研发周期越来越长[1,2]。这背后的原因复杂多样，其中药物研发过程中化学合成与生物筛选环节的分离和不兼容，成为了阻碍新药研发的关键因素。传统的有机合成方法不仅耗时耗力，且合成过程中大量使用的有机溶剂和严苛条件，与生物筛选所需的温和水性环境及小型化、平行化要求格格不入。不过，一

基于 T 细胞的免疫疗法需要获取大量的 T 细胞。从患者体内分离出的 T 细胞需要在体外进行激活和扩增处理，然后重新注入患者体内以对抗癌细胞。本研究旨在通过引入一种新型细胞培养方法来提高 96 孔板中人类 T 细胞的激活水平。研究结果表明，C.BIRD 细胞培养方法提高了人类 T 细胞的激活水平，但未引起不良激活反应。本研究展示了通过加速工艺开发流程来改进基于 T 细胞的免疫疗法研究的巨大潜力。

在生物学，便携式DNA测序，无标记单分子分析和纳米医学方面，膜纳米孔都体现了其重要的应用价值。传统的物质运输，其依赖于膜上数纳米宽的桶状通道，但是科技发展的需求，需要在形状上可调控的，更加宽的纳米通道，以适应更广泛的应用。而在天然状态下，并不存在这种类的纳米孔。利用蛋白合成该类型的纳米通道，也具有极大的挑战性。本文介绍了利用DNA进行上述结构可调和功能应用多样化的膜纳米孔的设计。该设计将成束的DNA双链制备成构成膜孔的亚单位，并逐步组装成形状上可调节的完整性膜孔，该孔的宽度可达几十纳米。用于识别

使用CRISPR基因组编辑技术能够快速生产患者或健康对照的诱导多能干细胞（iPSC），极大地加速了体外疾病模型系统的产生，用于研究人类疾病机制。然而，在工作流程中仍然存在实质性的限制。在从患者细胞中衍生iPSCs时，可以使用特定的选择标准从未被重编程的细胞中分离出多能细胞。分化过程可以通过使用特定的标记物来丰富目标细胞。最后，分选经过CRISPR编辑的单细胞将提高工作流程的效率。在上述的每一个步骤中，都可以使用柔性流式分选仪进行分选，避免对这些敏感细胞造成伤害。

在生物医学研究领域，药物研发一直是备受瞩目的焦点。传统的药物研发主要依赖动物模型，但这种方式存在诸多问题。动物模型难以精准模拟人体对药物的反应，在毒理学和病理生理学方面的差异尤为明显，导致大量药物在临床试验阶段失败，耗费了大量的时间、资金和人力。据统计，新药临床试验往往需要10-15年，成本高昂，且多数临床候选药物因安全性、药代动力学特性和疗效不佳等问题而夭折[1,2]。 与此同时，传统的二维（2D）细胞培养虽然应用广泛，但它无法真实反映体内复杂的细胞微环境，在预测临床试验结果方面表现欠佳[3]