案例应用丨I.DOT 助力 1353 人大规模人群新冠假病毒中和抗体研究

发布日期:2026-08-26



引言

日本福岛疫苗社区队列研究,依托 I.DOT 非接触微量分液系统完成千份血清样本高通量假病毒中和实验,揭示二价 mRNA 加强针后人群针对 XBB.1.5 变异株中和免疫衰减特征。





研究背景





新冠奥密克戎 XBB.1.5 变异株免疫逃逸能力强,即便接种二价 mRNA 加强疫苗,随接种后时间推移,体内中和抗体水平会逐步下降。既往已有不少研究报道二价加强针后中和能力下降,但基于大样本人群社区队列、系统分析接种后不同时长、基础疾病、既往感染、不同疫苗类型对 XBB.1.5 中和活性影响的真实世界研究仍然较少。


本研究依托日本福岛县乡村地区大型社区队列,纳入1353 名普通受试者,采用假病毒中和检测为主、活病毒中和实验做金标准验证,同时检测原始武汉株、XBB.1.5 的中和滴度,评估真实世界中普通人群接种二价 mRNA 加强针之后的体液免疫水平,识别中和应答低下的高危人群,为疫苗更新策略提供证据。


受试者来源:福岛县平田村、相马市、南相马市居民,均完成至少 2 剂 BNT162b2 原始 mRNA 疫苗,后续接种单价 / 二价 mRNA 加强针。采血时间为 2023 年 34 月,末次接种到采血的中位间隔 143 天。


受试者基线概况:

  • 中位年龄 50 岁,女性占 61.6%;

  • 53.1% 受试者存在高血压、糖尿病等基础共病;

  • 依据核衣壳 IgG 抗体判定,既往新冠感染占比仅 18.7%;

  • 86.6% 受试者接种过二价加强针。





核心研究结果





图 1:原始株与 XBB.1.5 毒株中和应答分布(文献 Figure1)


1.XBB.1.5 中和活性普遍衰减 末次 mRNA 加强针接种满 6 个月后,55.9% 受试者针对 XBB.1.5 的中和活性显著下降;全队列 XBB.1.5 中和 ID₅₀中位数为 79.0,原始武汉株 ID₅₀中位数 125.6;54.8% 受试者 XBB.1.5 中和滴度 ID₅₀≤100,提示对 XBB.1.5 的中和保护水平不足。


2. 既往感染显著提升中和能力(混合免疫优势) 有既往感染史人群,无论针对原始株还是 XBB.1.5,中和滴度中位数显著高于从未感染人群;多因素回归显示,既往感染可以独立提升 XBB.1.5 中和活性(aOR=1.77,P<0.001)。


3. 基础共病是中和应答降低独立危险因素 存在基础疾病受试者,针对 XBB.1.5 的中和应答显著降低(aOR=0.76,P=0.02),提示合并基础疾病人群,即便完成二价加强针,仍更容易出现中和抗体不足,属于免疫脆弱群体。


4. 不同二价疫苗应答存在差异 辉瑞、Moderna 的 BA.1/BA.2 版本二价加强针,相比单价疫苗,可以显著提升 XBB.1.5 中和活性;而 BA.4/BA.5 二价疫苗相比单价疫苗,未观察到统计学显著提升。


注:研究提示该现象可能受队列年龄、接种时间混杂因素干扰,不能直接等同于临床保护效力差异。


研究局限性:受日本疫苗优先老年人的政策影响,年龄、接种后时长、疫苗类型之间存在混杂偏移;没有评估重症、住院等临床终点;队列既往感染率偏低;没有检测其他变异株。






I.DOT(Cytena)

在本研究中的关键作用





原文实验原文描述:After series of diluted serum/plasma samples using I.DOT (Cytena) were mixed with 3000 units/well viruses of each strain in 10 mL/well with DMEM containing 10% FCS…


假病毒中和实验的核心难点:本研究 1353 份人血清样本,每份样本需要做多步倍比梯度稀释,设置复孔;同时要平行检测原始株、XBB.1.5 两种假病毒,全部在384 微孔板体系完成。 传统手动多通道移液,面对千份临床血清样本,工作量巨大,容易引入人为操作误差;珍贵临床血清样本量有限,需要尽可能节约样本;血清样本之间要严格规避交叉污染,否则直接造成中和滴度结果失真。 


图 2:I.DOT(Cytena/Dispendix)非接触微量分液系统整机外观


I.DOT 非接触纳升级分液系统,承担血清样本系列梯度稀释核心步骤,完整实验流程链路如下:

  • I.DOT 自动完成上千份血清样本在 384 孔板的梯度倍比稀释;

  • 梯度稀释血清分别与 3000 单位每孔的原始株 / XBB.1.5 假病毒 37℃共孵育 30 min;

  • 加入表达 ACE2、TMPRSS2 受体的 293FT 靶细胞;

  • 48h 孵育后加入荧光素酶底物,检测发光信号;

  • 根据发光值计算中和滴度 ID₅₀,评价样本中和活性;

  • 同时抽取部分样本做活病毒中和实验,验证假病毒结果的可靠性。


图 3:I.DOT 压力喷射非接触分液原理示意图






为什么千人大队列选择 I.DOT?





1. 非接触压力喷射分液,杜绝交叉污染 枪头不接触目标孔内液体,避免高滴度血清样本之间 carryover,对中和抗体这类高灵敏度血清学实验至关重要,保障 1353 份样本结果可信。


2. 纳升级精准分液,极大节约珍贵临床血清样本 纳升级精准分液,死体积极低。临床队列血清标本来之不易,同时还要分出样本做活病毒中和验证、核衣壳抗体检测,I.DOT 减少样本消耗,珍贵样本可以多项目复用。


3. 适配 384 高通量微孔板,处理大样本队列 8 通道独立可控,384 板可在数十秒完成分液,自动化批量完成上千份血清梯度稀释,相比人工操作,大幅压缩实验周期,同时消除不同操作人员带来的操作偏移,提升整批实验可重复性。


4. DropDetection 液滴检测功能,分液过程可溯源 实时检测每一个液滴,识别漏液、样本耗尽,每一块板分液结果输出报告,大规模队列实验便于实验记录留存,符合科研论文可复现的要求。


总结:这项研究证明,I.DOT 支撑标准化高通量假病毒中和平台,实现大样本人群真实世界疫苗免疫监测,助力变异株时代的疫苗策略评估。


参考文献

Zhao T, Tani Y, MakinoOkamura C, et al. Diminished neutralizing activity against the XBB1.5 strain in 55.9% of individuals post 6 months COVID19 mRNA booster vaccination. Front Immunol. 2024;15:1337520. doi:10.3389/fimmu.2024.1337520