购买了不同大小（16 - 160 千道尔顿）且具有不同克隆性（单克隆和多克隆）的抗体（见表 01）。随后，将这些抗体在适当的溶剂中稀释（1:2000）。接下来，为每种抗体创建液体样本，以便在进行I.DOT非接触式纳升级液体处理系统操作时使用。
在使用 Qubit Flex 荧光计测量抗体浓度时，按照 Qubit 检测试剂盒用户指南制备了标准品。最后，使用 20 微升样本体积（其中包含 2 微升测试样本，即 1:2000 抗体浓度以及 18 微升 Qubit 检测工作溶液）进行了蛋白质检测。
为了观察使用 I.DOT非接触式纳升级液体处理系统分配抗体是否会导致分配后抗体浓度发生变化，将 2 微升测试样本（抗体）用 I.DOT非接触式纳升级液体处理系统分配，并将相同体积的样本用移液器转移到含有 Qubit 检测工作溶液的 Qubit 检测微管中，然后使用 Qubit Flex 荧光计测定抗体浓度。从而对手动分配和 I.DOT非接触式纳升级液体处理系统分配抗体进行了比较。
使用I.DOT非接触式纳升级液体处理系统分发抗体并不会导致抗体的损失，这一点可以从抗体质量的变化中看出。在完成蛋白质检测以确定抗体浓度之后，对抗体浓度的Qubit 测量结果进行了分析（见表 2 和图 1）。
在手动移液和I.DOT非接触式纳升级液体处理系统分液方法中，抗体的浓度没有显著差异。因此，I.DOT非接触式纳升级液体处理系统不会对抗体的分液造成任何阻碍。所以，I.DOT非接触式纳升级液体处理系统可以用于快速且准确地分装抗体。
上述数据表明，使用I.DOT非接触式纳升级液体处理系统进行抗体分配并不会影响所分配抗体的浓度。因此，I.DOT非接触式纳升级液体处理系统不仅能够快速、准确地分配不同大小的抗体，还能确保结果的一致性和可靠性。
